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試劑空白吸光度是反映試劑質量的指標之一，但不能反映試劑質量的全部。試劑成份、純度、用量及穩(wěn)定性，才是保證試劑質量的關鍵所在。目前市售的一些試劑具有抗干擾作用，主要是通過加入抗干擾物質或使用新的色素原以避免內源性物質的干擾。但值得注意的是：一些試驗項目在消除內源性物質干擾的同時，會帶來樣品含量真實性的變化。

1 試劑空白

試劑空白吸光度是反映試劑質量的指標之一。每種試劑都有一定的空白吸光度范圍，試劑空白吸光度的改變往往提示該試劑的變質；如利用Trinder反應為原理的檢測試劑會因含酚類物質被氧化為醌而變?yōu)榧t色。堿性磷酸酶、r一谷氨酰轉肽酶、*等檢測試劑會因基質分解出硝基酚或酚基苯胺而變黃。有些試劑久置后變渾濁。這些情況均可使空白吸光度升高。*氨基轉移酶、天冬氨酸氨基轉移酶等負反應，在放置過程中其試劑空白吸光度會因NADH自行氧化為NAD+而下降。原則上，吸光度上升的反應，其試劑空白吸光度越低越好，不能超過一個高限；相反，吸光度下降的反應，其試劑空白吸光度不能低于一個低限。因此，試劑空白吸光度限值，常作為程序參數(shù)輸入，如經(jīng)核查超限，儀器會自動報警，提示更換試劑。需要指出的是，還原型輔酶I(或II)等投料量不足或劣質的原料，往往需要加大用量，才使“表觀”吸光度上升，湊合過試劑空白核對的“關”，其后果為如下情況：

線性范圍變窄 現(xiàn)象：高值測不高。原因：生產(chǎn)試劑時有效成分投料量不足；試劑成份穩(wěn)定性較差。
靈敏度變低現(xiàn)象：酶促反應速度曲線斜率下降，測定結果有嚴重系統(tǒng)誤差。原因：試劑底物濃度不足。
低值偏高 現(xiàn)象：試劑空白的變化曲線(吸光度VS時間)明顯波動。原因：試劑自身不穩(wěn)定，自行分解；工具酶純度不夠，雜酶含量超限，導致干擾作用。

2 樣品信息

樣品的溶血、脂血、黃疸等會對測定結果產(chǎn)生非化學反應的干擾。因此，應根據(jù)溶血、脂濁、黃疸的光譜吸收特性，采用雙波長或多波長的檢測模式，并在結果計算中扣除因溶血、脂血、黃疸引起的影響，減少干擾程度。

3 測定范圍

每種待測物都有一個可測定的濃度或活性范圍，樣品結果若超過此范圍，分析儀將顯示結果超過范圍的提示。表示試劑已經(jīng)變質，應更換合格試劑。

4 底物耗盡

使用連續(xù)監(jiān)測法、兩點法測定酶活性時，若酶活性非常高，底物接近被耗盡，吸光度上升或下降會超過某一吸光度變化范圍，監(jiān)測期的吸光度將偏離線性，使測定結果不可靠。

5 酶的預活化

測定血清中的某些酶，如CK，離體(采血)后很容易失活。失活的原因是酶活性中心的活性基因巰基(一SH)被氧化造成的。只有通過適當?shù)倪€原作用才能重新激活。如CK—NAC試劑盒即含有CK活化劑，名為N一乙酰半*。實驗研究證明，NAC對血清中已失活的CK活化過程約需180 S。這就是CK測定為什么要延遲時間較長的理論依據(jù)。在AST，ALT采用IFCC推薦方法測定時需要磷酸吡哆醛預活化。需要強調：含有活化劑的試劑，其測定酶活性的結果要高些。

6 校準與結果溯源性

酶的校正：要滿足在同一方法學、同一測定條件、與理論計算的FACTOR值差異不大，沒有發(fā)現(xiàn)有明顯影響因素，方可進行校正。

檢驗結果溯源性，得建立一個可靠的參考系統(tǒng)作為準確性基礎，然后將準確性轉移到常規(guī)方法測定中去，使常規(guī)方法測定結果可溯源到參考系統(tǒng)所提供的準確性基礎上來。在實現(xiàn)溯源性目標過程中，永遠以患者新鮮標本為實驗對象，以方法學對比試驗方法為驗證手段。方法學對比試驗常采用回歸方程進行統(tǒng)計分析，假如斜率接近1，截距較小，這意味著常規(guī)方法對標本測定結果和溯源目標參考系統(tǒng)對標本檢測結果非常接近